使用奧林巴斯體視顯微鏡 SZ61 觀察水中浮游生物時，需結合其格里諾光學系統的高景深、寬視場特性，以及浮游生物的動態觀察需求。以下為針對性操作指南與分析要點：

一、樣品采集與預處理：保持生物活性

采樣策略

表層水采集：使用 25 號浮游生物網（孔徑 64μm）在水面下 0.5 米處呈 “∞" 形緩慢拖動 1-2 分鐘，濃縮樣品至 50mL 標本瓶。

分層采樣：深水湖泊需用采水器分表層、中層、底層取樣，標記深度（如 “5m 層"）。

樣品固定與濃縮

臨時觀察：直接取 10mL 水樣，靜置 5 分鐘待生物沉降，用移液槍吸取底部 2mL 至載玻片（避免攪動）。

固定保存：若需長期觀察，加入 1-2 滴魯哥氏液（Lugol's solution）固定（每 100mL 水樣加 5mL），避光靜置 24 小時后虹吸去除上清液，留 5mL 沉淀。

制片技巧

載玻片制備：在載玻片中央滴 1 滴樣品，覆蓋 22mm×22mm 蓋玻片（先接觸一側再緩慢放下，避免氣泡）。

防樣品流動：若生物游動過快，可在蓋玻片四周涂少量凡士林，或加入 1% 甲基纖維素溶液減緩運動。

二、SZ61 顯微鏡參數設置：優化動態觀察

光路與照明

模式選擇：透射光（SZ2-ILST 環形底光）為主，可調光闌控制亮度（40%-60%），避免強光導致生物避光或死亡。

對比度增強：開啟斜射光（通過底光轉盤調節角度至 30°），利用格里諾系統的立體感突出浮游生物輪廓（如硅藻的殼紋、輪蟲的附肢）。

放大倍率策略

初篩：10× 目鏡 + 0.5× 輔助物鏡（總 6.7×-45×），快速掃描全視野，記錄優勢類群（如綠藻、枝角類）。

精觀：切換 15× 目鏡（總 10×-67.5×）或 2× 輔助物鏡（總 20×-135×），觀察細節（如橈足類的觸角分節、硅藻細胞壁的孔紋）。

動態追蹤技巧

開啟載物臺移動尺的微調功能（最小步距 0.1mm），跟隨快速游動的生物（如草履蟲）。

使用視頻錄制功能（搭配 DP27 相機），后期逐幀分析運動軌跡或行為模式。

三、分類觀察要點：常見浮游生物識別

類群形態特征（SZ61 下典型表現）觀察重點

硅藻（Bacillariophyta）細胞壁呈對稱殼狀，具細密孔紋（如羽紋硅藻的縱溝），運動時呈直線滑行殼面花紋（屬種鑒定關鍵）、色素體顏色（黃綠 / 褐色）

綠藻（Chlorophyta）球形 / 盤形，含綠色葉綠體（如柵藻的片狀葉綠體、衣藻的眼點）鞭毛數量（衣藻 2 根）、群體排列方式（空球藻呈空心球體）

輪蟲（Rotifera）身體分頭部、軀干、尾部，頭冠具纖毛環（運動時如旋轉車輪）咀嚼器形態（槌型 / 枝型）、趾部結構（錨狀 / 爪狀）

枝角類（Cladocera）身體側扁，被兩瓣甲殼包裹，第二觸角發達呈枝狀（如溞屬）頸溝位置、殼刺數量（溞屬后背角有殼刺）

橈足類（Copepoda）身體分節明顯，第一觸角細長（雄體呈執握狀），尾叉對稱體節比例（前體部與后體部界限）、卵囊形態

四、操作技巧與注意事項

快速計數法

采用 “網格計數法"：在目鏡中放置 10×10 網格測微尺，隨機選取 5-10 個視野計數，取平均值后換算成單位體積數量（個 / L）。

避免生物聚集

若樣品中生物密度過高（視野內＞50 個），可用過濾后的原水稀釋 1-5 倍，確保單個生物清晰可見。

環境控制

樣品溫度維持在 15-25℃（可使用加熱載物臺），避免溫差導致生物活力下降。

觀察時間不超過 30 分鐘，防止蓋玻片下氧氣耗盡（必要時可通過顯微注射針補充空氣）。

五、典型案例：湖泊浮游生物群落分析

樣品：某富營養化湖泊表層水，經魯哥氏液固定后取 1mL 制片。

觀察：10× 目鏡 + 1× 物鏡（總 16×）下可見大量綠色球形群體（空球藻，約 200 個 /mL）、少量透明甲殼類（老年低額溞，5 個 /mL），以及硅質殼面反光的舟形硅藻（150 個 /mL）。

結論：綠藻占優勢，提示水體輕度富營養化，溞類數量較少可能與藻類密度過高有關。

通過 SZ61 的高景深與寬視場優勢，可實現浮游生物的活體動態觀察、分類鑒定及定量分析，適用于生態學調查、水質監測及教學研究場景。操作時需注意保持生物活性，并結合分類特征逐步細化觀察。