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相差 熒光活細胞顯微時間序列動態(tài)觀察采集設(shè)備

更新時間:2025-09-02      點擊次數(shù):72

相差 - 熒光活細胞顯微時間序列動態(tài)觀察,是將相差顯微鏡技術(shù)與熒光顯微鏡技術(shù)結(jié)合,對活細胞進行長時間、周期性的動態(tài)成像記錄,從而實時追蹤細胞形態(tài)變化、亞細胞結(jié)構(gòu)動態(tài)及分子表達 / 定位等過程的前沿顯微成像方法。該技術(shù)既解決了活細胞無標記觀察的需求,又實現(xiàn)了特異性分子靶向追蹤,是細胞生物學(xué)、發(fā)育生物學(xué)、藥理學(xué)等領(lǐng)域研究活細胞動態(tài)行為的核心手段。


一、核心技術(shù)原理:相差與熒光的 “互補協(xié)作"

該技術(shù)的核心是兩種顯微技術(shù)的協(xié)同 —— 相差技術(shù)負責(zé) “無標記看形態(tài)",熒光技術(shù)負責(zé) “特異性看分子",二者結(jié)合實現(xiàn)活細胞動態(tài)的 “全景 + 精準" 觀察。

1. 相差顯微鏡技術(shù):無標記觀察活細胞形態(tài)

活細胞通常透明(折射率與周圍培養(yǎng)基差異小),普通明場顯微鏡難以分辨細節(jié)。相差技術(shù)通過將細胞內(nèi)部折射率差異轉(zhuǎn)化為明暗對比,無需染色即可觀察活細胞的形態(tài)、運動及內(nèi)部結(jié)構(gòu)(如細胞核、線粒體、細胞膜邊緣),避免了染色對細胞活性的破壞。

關(guān)鍵原理:利用光的 “相位差"(光穿過細胞不同結(jié)構(gòu)時,因折射率不同導(dǎo)致傳播速度差異,產(chǎn)生相位差),通過顯微鏡內(nèi)的 “相差板" 將不可見的相位差轉(zhuǎn)化為可見的 “振幅差"(明暗差異),使透明細胞呈現(xiàn)清晰的明暗對比圖像。

優(yōu)勢:無標記、不損傷細胞,可長期觀察細胞存活狀態(tài);適合觀察細胞貼壁、遷移、分裂等宏觀動態(tài)行為。

2. 熒光顯微鏡技術(shù):特異性追蹤分子 / 亞細胞結(jié)構(gòu)

熒光技術(shù)通過 “熒光探針"(如熒光染料、熒光蛋白)與細胞內(nèi)特定靶點(如 DNA、蛋白質(zhì)、細胞器膜)特異性結(jié)合,在激發(fā)光照射下探針發(fā)出熒光,從而實現(xiàn)對目標結(jié)構(gòu)的精準定位和動態(tài)追蹤。

關(guān)鍵原理:基于 “熒光現(xiàn)象"—— 熒光探針吸收特定波長的激發(fā)光后,電子躍遷到高能級,再回到基態(tài)時釋放出波長更長的熒光;顯微鏡通過 “激發(fā)濾光片"(篩選激發(fā)光)、“ dichroic 鏡"(反射激發(fā)光、透過熒光)和 “發(fā)射濾光片"(篩選熒光),僅采集目標熒光信號,排除背景干擾。

常用探針舉例:

細胞核標記:DAPI(結(jié)合 DNA,發(fā)藍色熒光);

細胞骨架標記:Alexa Fluor 488 - 鬼筆環(huán)肽(結(jié)合肌動蛋白,發(fā)綠色熒光);

分子表達追蹤:GFP(綠色熒光蛋白,融合到目標蛋白上,實現(xiàn)動態(tài)定位)。

3. 時間序列成像:動態(tài)記錄細胞行為

通過顯微鏡的自動控制模塊(如電動載物臺、自動聚焦、快門控制),按設(shè)定的時間間隔(如每 5 分鐘、每 1 小時)對同一視野的細胞進行連續(xù)成像,生成 “時間序列圖像棧" 或動態(tài)視頻。結(jié)合圖像分析軟件(如 ImageJ、MetaMorph),可量化分析細胞遷移速度、分裂周期、熒光信號強度變化等參數(shù)。


二、核心應(yīng)用場景:聚焦 “活細胞動態(tài)過程"

該技術(shù)因能兼顧 “無損傷" 與 “特異性",廣泛應(yīng)用于需實時追蹤細胞動態(tài)的研究領(lǐng)域:

應(yīng)用領(lǐng)域具體研究方向技術(shù)價值

細胞生物學(xué)細胞分裂周期追蹤、細胞遷移 / 侵襲、細胞凋亡動態(tài)無標記觀察分裂形態(tài),同時用熒光標記染色體(如 H2B-GFP),精準定位分裂階段

發(fā)育生物學(xué)早期胚胎發(fā)育(如斑馬魚 / 線蟲胚胎細胞分化)、干細胞分化動態(tài)長期記錄胚胎細胞增殖分化過程,熒光標記分化標志物(如 Oct4、Sox2)

藥理學(xué)藥物對細胞的動態(tài)影響(如藥物誘導(dǎo)的細胞骨架重組、凋亡過程)實時觀察藥物作用下細胞形態(tài)變化,同時用熒光探針檢測凋亡信號(如 Annexin V)

分子生物學(xué)蛋白質(zhì)定位與轉(zhuǎn)運(如膜蛋白內(nèi)吞、細胞器間物質(zhì)交換)熒光標記目標蛋白,追蹤其在細胞內(nèi)的動態(tài)移動路徑

病毒學(xué)病毒入侵宿主細胞的過程(如新冠病毒與細胞膜結(jié)合、病毒顆粒在細胞內(nèi)擴散)熒光標記病毒顆粒(如 GFP 標記病毒衣殼蛋白),實時記錄入侵步驟


三、關(guān)鍵技術(shù)挑戰(zhàn)與解決方案

活細胞長時間成像需克服 “細胞存活" 與 “成像質(zhì)量" 的矛盾,核心挑戰(zhàn)及應(yīng)對策略如下:

1. 細胞活性維持:避免成像過程損傷細胞

長時間成像(數(shù)小時至數(shù)天)中,光照、溫度、CO?濃度等均可能影響細胞存活,需通過 “環(huán)境控制模塊" 解決:

溫度控制:顯微鏡載物臺配備加熱板 / 加熱套,維持 37℃(哺乳動物細胞)恒溫,避免溫度波動導(dǎo)致細胞代謝紊亂;

氣體控制:內(nèi)置 CO?培養(yǎng)小室(通入 5% CO?),維持培養(yǎng)基 pH 穩(wěn)定(避免 pH 變化導(dǎo)致細胞凋亡);

濕度控制:小室加裝濕度模塊,防止培養(yǎng)基蒸發(fā)導(dǎo)致滲透壓升高;

光毒性抑制:

選擇 “低光毒性熒光探針"(如 GFP 變體 mNeonGreen,比傳統(tǒng) GFP 更亮,可降低激發(fā)光強度);

采用 “脈沖式激發(fā)"(縮短激發(fā)光照射時間,如每次照射 10-50ms),減少光對細胞的氧化損傷;

優(yōu)先用相差成像記錄形態(tài),僅在關(guān)鍵時間點啟動熒光成像。

2. 成像穩(wěn)定性:避免長時間成像的 “漂移"

長時間成像中,載物臺位移、焦距偏移(如培養(yǎng)基蒸發(fā)導(dǎo)致液面下降)會導(dǎo)致圖像模糊,需通過 “自動校正模塊" 解決:

自動聚焦(Auto-focus):基于 “對比度檢測" 或 “激光反射聚焦",每次成像前自動調(diào)整物鏡焦距,確保細胞始終處于焦平面;

自動載物臺校正(Auto-stage correction):通過圖像中 “參考標記"(如培養(yǎng)皿邊緣、固定的細胞結(jié)構(gòu)),實時校正載物臺的 X/Y 軸位移;

使用高穩(wěn)定性載物臺:采用無振動的電動載物臺,避免環(huán)境振動(如實驗室人員走動)對成像的影響。

3. 圖像信噪比:排除背景干擾,清晰捕捉信號

活細胞成像中,背景熒光(如培養(yǎng)基自發(fā)熒光、細胞 autofluorescence)會影響信號質(zhì)量,需通過 “光學(xué)優(yōu)化 + 軟件處理" 解決:

光學(xué)層面:

使用 “高數(shù)值孔徑(NA)物鏡"(如 NA 1.4 的油鏡),提高熒光信號采集效率;

搭配 “共聚焦掃描模塊"(可選升級),通過針孔排除焦外熒光,顯著提升信噪比(適合厚樣本或高背景場景);

軟件層面:

成像后用軟件(如 ImageJ)進行 “背景扣除"“平滑濾波",減少噪聲干擾;

對時間序列圖像進行 “配準",校正微小位移導(dǎo)致的信號偏移。


四、典型實驗流程示例(以 “細胞遷移追蹤" 為例)

樣本制備:將待觀察細胞(如 HeLa 細胞)接種到 “玻璃底培養(yǎng)皿"(適配顯微鏡載物臺,保證光學(xué)清晰度),加入含血清的培養(yǎng)基,置于 37℃、5% CO?培養(yǎng)箱中貼壁生長至 50%-70% 融合度;

熒光標記(可選):若需標記特定結(jié)構(gòu)(如細胞骨架),加入熒光探針(如 Alexa Fluor 488 - 鬼筆環(huán)肽),37℃孵育 20 分鐘,用 PBS 洗去未結(jié)合探針,加入新鮮培養(yǎng)基;

顯微鏡 setup:將培養(yǎng)皿放入顯微鏡的 “環(huán)境控制小室",設(shè)定溫度 37℃、CO?濃度 5%,等待 10 分鐘讓細胞適應(yīng)環(huán)境;

視野選擇與參數(shù)設(shè)定:

在明場 / 相差模式下找到目標視野(選擇細胞分布均勻、無明顯雜質(zhì)的區(qū)域);

設(shè)定成像模式:同時采集 “相差圖像"(記錄細胞形態(tài))和 “熒光圖像"(記錄細胞骨架);

設(shè)定時間序列參數(shù):成像間隔 10 分鐘,總成像時間 12 小時(共 72 個時間點),每個視野拍攝 3 個 Z 軸層面(避免焦距漂移);

啟動成像:開啟自動成像程序,期間避免觸碰顯微鏡或?qū)嶒炁_,防止振動;

數(shù)據(jù)分析:

用 ImageJ 導(dǎo)入時間序列圖像棧,進行背景扣除、Z 軸投影(取最清晰層面);

使用 “細胞追蹤插件"(如 TrackMate)標記單個細胞,計算細胞遷移軌跡、遷移速度、方向角等參數(shù);

結(jié)合熒光信號強度分析,觀察細胞遷移過程中細胞骨架的動態(tài)變化(如絲狀偽足的伸出與收縮)。


綜上,相差 - 熒光活細胞顯微時間序列動態(tài)觀察技術(shù),通過 “無標記 + 特異性標記" 的協(xié)同優(yōu)勢,為活細胞動態(tài)行為研究提供了高時空分辨率的可視化工具,其核心是在 “細胞存活" 與 “成像質(zhì)量" 之間找到平衡,同時依賴精準的環(huán)境控制和后期數(shù)據(jù)分析,才能充分發(fā)揮其在生命科學(xué)研究中的價值。


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